sábado, 13 de enero de 2018

PRACTICA 13: RECUENTO DE PLAQUETAS POR MÉTODO DIRECTO.

PRACTICA NUMERO 13
10/01/2018

OBJETIVOS:

Cuantificacion de plaquetas presentes en sangre por el metodo directo en camara de Neuvauer.

UTILIDAD CLINICA:

FUNDAMENTOS:
APARATAJE:

-Microscopio.

MATERIALES:

-Sangre capilar.
-Lancetas.
-Placa de petri.
-Papel de filtro.

REACTIVOS:

-Oxalato Anionico al 1%.

PRODECIMIENTO:

-Coger el tubo con el tapon rojo ( Oxalato Amonico al 1 %) y añadir 20 microlitros de sangre que ha sido recien extraida mediante una lanceta.


-Mezclar suavemente.
-Preparar una camara humeda en una placa de petri con papel de filtro y agua destilada.
-Retirar del envoltorio la camara de Neuvauerr y añadirle 10 microlitros del tubo anterior.



-Introducir 15 minutos la camara de Neuvauer en la camara humeda.


-Visualizar en el microscopio para realizar el contaje de plaquetas.



RESULTADOS:

Cuadro 2: 114 plaquetas.
Cuadro 4: 111 plaquetas.
                                                   225 plaquetas---------0.2 mm3
                                                   x ------------------------1 mm3

                              1125 plaquetas en 1 mm3.

1125 plaqetas en 1 mm3 x 1000= 112500 plaquetas presentes en sangre.

OBSERVACIONES:

Da unos resultados aceptables para la muestra problema.

domingo, 17 de diciembre de 2017

PRACTICA 12:TARJETA CON REACTIVOS DESHIDRATADOS PARA DETECCION DE GRUPO SANGUINEO.

PRACTICA NUMERO 12
15/12/17

OBJETIVOS:

Determinacion del grupo sanguineo mediante tarjetas con reactivos deshidratados.


FUNDAMENTOS:

El test esta basado en la hemaglutinacion directa. Los anticuerpos reactivos secos presentes en la tarjeta aglutinarian los eritrocitos con los correspodientes antigenos. La falta de aglutinacion en un campo indica la ausencia del antigeno correspondiente.
El grupo sanguineo del individuo al cual se le realiza el test se determina a partir del patron de aglutinacion en la Eldon Card.


REACTIVOS:

-El campo azul anti-A contiene Ig-M monoclonal murina anti-A de la linea celular Birma-1.
-El campo anti-B contiene Ig-M monoclonal murina anti-B de la linea LB-2.
-El campo anti-D contiene Ig-M humano anti-D de la linea Ms-201.
-El campo control no contiene anticuerpos, pero si el mismmo PBS que los otros campos y un colorante azul.

MATERIALES:

-Agua destilada.
-Tarjeta ELDON DOCTOR KIT DKS 2511.
-Sangre capilar.

PROCEDIMIENTO:

-Rellenar los datos del paciente al que va ha realizar el analisis.
-Aplique una gota de agua dentro de cada area reactiva coloreada utilizando una pipeta.
-Desinfecte la zona del dedod donde va a realizar la puncion y deje secar al aire el dedo.
-Realice la puncion presionando la lanceta firmemente sobre la punta del dedo en la cara que se encuentre en direccion al dedo meñique.
-Masajee suavemente el dedo donde se realizo la puncion con el fin de obtener una gota de sangre. Recoja la gota de sangre sobre un EldonStick el cual aproximira por debajo de la gota del dedo.
-Mezclar las sangre en los circulos con la gota de agua y esperar a que el reactivo se disuelva.
-Extender la sangre por todo el circulo.
-Para desarrollar aglutinacion la tarjeta debe rotar durante unos 40 segundos.
-Los resultados se leen al momento.
-Si queremos conservar la tarjeta con los resultados, la dejamos secar sobre una superficie.






RESULTADO:

El resultado es A+, aunque el Anti-D no se puede apreciar mucho.

lunes, 11 de diciembre de 2017

PRACTICA 11: PRUEBAS CRUZADAS

PRACTICA NUMERO 11
1/12/2017

OBJETIVOS:

El objetivo es detectar los posibles anticuerpos que se hallen fijados a la membrana de los hematíes con antiglobulina humana.

FUNDAMENTOS:

Esta prueba sirve para determinar la compatibilidad sanguínea enfrentando el suero del receptor con los hematíes del donante. (Prueba cruzada mayor).

APARATAJE:

-Centrifuga.

MATERIALES:

  • Pipetas
  • Centrifuga
  • Tubos de ensayo y gradilla
  • Vaso precipitado
REACTIVOS:

  • Antiglobulina humana
  • Suspensión de hematíes (donante)
  • Suero (receptor)
  • Solución salina fisiológica
  • Albúmina

PROCEDIMIENTOS:

-En el primer tubo (tubo salino) añadimos 2 gotas de suspensión de hematíes al 2% y 2 gotas del suero e incubamos a tª ambiente durante 30 minutos.
-En el segundo tubo (tubo proteico) añadimos 2 gotas de suspensión de hematíes al 2%, 2 gotas del suero y 2 gotas de albúmina e incubamos a 37 ºC durante 30 minutos.
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-Transcurrido el tiempo centrifugamos los dos tubos a 1000 rpm durante 1 minuto.
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-Si en el primer tubo (salino) hay aglutinación es que las dos muestras son incompatibles y si no existe aglutinación son compatibles.
-Si en el tubo proteico existe aglutinación la muestra no es compatible, pero si no existe aglutinación hay que confirmarlo, para ello:
-Lavamos 3 veces con solución salina y a continuación añadimos 2 gotas de antiglobulina (Coombs).
IMG_20170221_105051.jpg
-Centrifugamos 1000 rpm durante 1 minuto y vemos el resultado.
IMG_20170221_103541.jpg IMG_20170221_105040.jpg
-Si existe aglutinación las dos muestras son incompatibles y si no existe aglutinación son compatibles.
RESULTADOS:

Resuspendemos el botón hemático después de centrifugar y observamos la aglutinación.
IMG_20170221_103138.jpg
Tubo salino después de centrifugar
IMG_20170221_105040.jpg
Tubo proteico después de añadir el Coombs y centrifugar
IMG_20170221_105419.jpg
Como se observa en la imagen no existe aglutinación en ningún tubo (los dos estaban iguales), lo que quiere decir las dos muestras son compatibles.
OBSERVACIONES:

Pueden transfundirse sangre.

PRACTICA 10: ESCRUTINIO DE ANTICUERPOS IRREGULARES.

PRACTICA NUMERO 10
27/11/17

OBJETIVOS:

Detectar la presencia de anticuerpos irregulares mediante las pruebas de salino inmediato y proteico inmediato.

UTILIDAD CLINICA:

El objetivo de esta práctica es enfrentar un suero problema con hematíes test de fenotipo conocido con objeto de detectar la presencia de anticuerpos en el suero, de los cuales se conocen con exactitud los antígenos presentes en su membrana, y aplicando técnicas de aglutinación salina y test de Coombs indirecto determinaremos dichos anticuerpos.
De este modo se detectan anticuerpos completos Ig M e incompletos Ig G.
FUNDAMENTOS:

Los anticuerpos irregulares o aglutininas irregulares son anticuerpos anti glóbulos rojos. Están presentes en algunas personas que no tienen el antígeno correspondiente en la superficie de sus glóbulos rojos. Una persona Rh negativa no debería tener efectos anticuerpos anti-Rh. Su presencia es posible después de recibir una transfusión o después de dar a luz a un hijo Rh positivo. Su búsqueda es sistemática en el caso de transfusión de sangre y en mujeres embarazadas Rh- negativas para poder detectar una incompatibilidad materno fetal.

APARATAJE:

Centrifugadora:
Baño maria:

MATERIALES:

-Tubos de hemolisis.
-Pipetas automaticas y puntas de pipeta.
-Suspension de hematies al 2 %.
-Suero del paciente.

REACTIVOS:

-Albumina.

PROCEDIMIENTO

-Añadimos a un tubo 2 gotas de suero problema + 2 gotas de los hematíes test. (Salino inmediato). Luego, incubamos a tª ambiente durante 30 minutos, mezclamos y centrifugamos a 1000 rpm durante 1 minutos.
-Añadimos a otro tubo 2 gotas del suero problema + 2 gotas de hematíes test + 2 gotas de albúmina. (Proteico inmediato). Luego, incubamos a 37 ºC durante 30 minutos, mezclamos y centrifugamos a 1000 rpm durante 1 minutos.
IMG_1855.JPG
-Observamos la presencia de aglutinación en los tubos. La presencia de aglutinación indica un resultado positivo y el suero posee anticuerpos irregulares.
-Si en los tubos no se observa aglutinación hacemos un Coombs para detectar la presencia de anticuerpos. Para ello añadimos 2 gotas de antiglobulina y centrifugamos a 1000 rpm durante 1 minuto.
IMG_1859.JPG-Si observamos la presencia de aglutinación al realizar el Coombs, es un resultado positivo y significa que poseemos anticuerpos irregulares. En caso negativo nuestro suero problema no posee anticuerpos irregulares.
RESULTADOS:
IMG_1860.JPG
Nuestro resultado ha sido negativo, es decir, al resuspender el botón hemático no hemos observado aglutinación alguna, por lo que el suero problema no posee anticuerpos irregulares..


PRACTICA 9: DETERMINACION DEL FENOTIPO Y GENOTIPO MAS PROBABLE DEL GRUPO RH.

PRACTICA NUMERO 9
24/11/17

OBJETIVOS:

Investigar el genotipo mas probable del sistema Rh enfrentando los hematíes problema a distintos sueros que contienen anticuerpos dirigidos contra los antígenos que componen el sistema Rh.

UTILIDAD CLINICA:


FUNDAMENTOS:
APARATAJE:

Centrifuga:

MATERIALES:

-Material para lavado de hematies.
-Tubos de hemolisis.
-Pipetas pasteur y papel parafilm.

REACTIVOS:

-Anti-D
-Anti-C
-Anti-c
-Anti-E
-Anti-e
-Autocontrol D.
-SSF.

PROCEDIMIENTO:

-Realizar el lavado de hematíes de la muestra problema y una dilucion al 5% en SF.
-Rotular los 6 tubos con las letras C,D,c,E,e y CD.
-Depositar 2 gotas del anti-suero correspondiente y dos gotas de suspensión de hematíes problema.
-Tapar los tubos con parafilm y agitar.
-Centrifugar a 1000 rpm durante 1 minuto.
-Resuspender el sedimento de los hematíes dando pequeños golpes en el fondo del tubo.
-Observar la presencia o ausencia de aglutinación.

RESULTADOS:


PRACTICA 8: DIACLON ABO/D + REVERSE GROUPING.

PRACTICA NUMERO  8
22/11/17

OBJETIVOS:

Determinación de los grupos sanguíneos ABO/RH combinado con la prueba inversa o grupo serico.

UTILIDAD CLÍNICA:

La tarjeta ID-Card permite determinar el grupo hematico y el grupo serico para ABO, así como la determinación del antígeno RhD.

FUNDAMENTOS:

Los antígenos anti-A y anti-B son necesarios para determinar la presencia o ausencia de los antígenos A/B en hematíes humanos.
La determinación de los grupos sanguíneos ABO requiere la realización de una contraprueba serologica o grupo inverso con plasma o suero para confirmar los resultados obtenidos en la prueba hematica.

APARATAJE:

Centrifuga de tarjetas:

MATERIALES:

-Muestra de sangre recien extraida.
-Tubos de hemolisis.
-Micropipetas y puntas de pipeta.
-SSF.

REACTIVOS:

-Tarjeta ID-Card DiaClon ABO/D + Reverse grouping.


-Diacel A1 y Diacel B.

PROCEDIMIENTOS:

-Para la determinación del grupo ABO, se debe preparar una suspensión de hematíes al 5% de la siguiente manera:
1.Pipetear 0.5 ml de ID-Diluent 2 en un tubo.
2.Agregar 25 microlitros de concentrado de hematíes y mezclar.

-Se identifica la tarjeta con el nombre del donante o paciente.
-Se retira la lamina de sellado solo de los microtubos que se vayan a utilizar.
-Se pipetea 10 microlitros de suspensión de hematíes en los tubos A, B, D, C.



-Se pipetea 50 microlitros de plasma en los tubos A1 y B.(Sericos)
-Se pipetea 50 microlitros de Diacel 1 en el tubo A1 y 50 microlitros de Diacel 2 en el tubo B (Séricos).




-Sellar la tarjeta y centrifugar durante 10 minutos.



RESULTADOS:


El resultado es B+.

OBSERVACIONES:

PRACTICA 7: GRUPO SÉRICO.

PRACTICA NUMERO 7
17/11/17

OBJETIVOS:

Determinar el grupo sanguíneo mediante la técnica del grupo sérico.

UTILIDAD CLÍNICA:

Por determinacion inversa se realiza el grupo serico, se usan hematies reactivos A y B para establecer la presencia o ausencia de anticuerpos Anti-A y Anti-B en el suero.

FUNDAMENTOS:


APARATAJE:

-Baño Maria



MATERIALES:

-Tubos de hemolisis de 3 ml.
-Suero.

REACTIVOS:

-Suspension de hematies al 2 % A1
-Suspensión de hematíes al 2% B.



PROCEDIMIENTO:

-Se introduce en el baño maría el suero para inactivarlo a 56ºC durante 30 minutos.

-Se rotulan dos dos tubos, uno con A1 y otro con B.
-A cada tubo se le añade dos gotas de suero inactivado.
-A continuación al tubo A1 con el suero se le añade suspensión de hematíes al 2% A1.
-Y al tubo B con el suero se le añade suspensión de hematíes al 2% B.



-Por ultimo, se centrifuga 1 o 2 minutos a 1000rpm.



-Cuando se haya centrifugado, agitar el tubo y determinar el grupo sanguíneo.





RESULTADOS:


No se observa aglutinación por lo que el grupo sanguíneo es AB.

OBSERVACIONES:

Los anticuerpos anti A y anti B sericos de la mayoría de los pacientes y donantes suelen ser demasiados debiles para aglutinar los glóbulos rojos sin centrifugacion o incubación prolongada por lo que son necesarios pruebas serologicas con métodos que detecten los anticuerpos en tubos, micro-placas o aglutinación en columna.